BioVector® TR-iBRB2 Rat Conditionally Immortalized Retinal Capillary Endothelial Cell Line / BioVector® TR-iBRB2 大鼠条件永生化视网膜毛细血管内皮细胞株（血-视网膜屏障内层屏障模型）

一 产品基本信息与分子生物学背景

• 细胞株/品系别名：TR-iBRB2、TR-iBRB 2克隆、FERM BP-6507。

• 生物学来源：大鼠（Rattus norvegicus，Wistar转基因大鼠品系）。

• 细胞形态与组织谱系：贴壁型成纤维细胞样/梭形内皮细胞（Fibroblastic/Spindle Endothelial Monolayer）。源自大鼠眼部原位视网膜微血管毛细血管内皮。

• 双阶条件永生化作用机制（The Dual-State $tsA58$ Switch）：

  TR-iBRB2是由日本金泽大学（Ken-ichi Hosoya团队）与东北大学（Tetsuya Terasaki团队）建立的经典屏障模型。它提取自携带温度敏感型猿猴病毒40大T抗原突变基因（$tsA58$ SV40 large T-antigen）的转基因大鼠组织。大T抗原的转录与表达活性直接受到外部培养温度的物理调控，展现出独特的“双相开关”：

  • 增殖/永生化状态（Permissive Window，33 ℃）：在 33 ℃ 较低温度下培养时，细胞体内表达出高活性、结构稳定的 SV40 大 T 抗原。该抗原持续抑制宿主抑癌基因（如 p53 和 Rb），促使内皮细胞规避 Hayflick 极限，表现出极强的体外分裂增殖与高效传代能力（倍增时间约 19 - 21 小时）。

  • 分化/高功能状态（Non-Permissive Window，37 ℃ - 39 ℃）：当将环境温度上调至 37 ℃ 或 39 ℃ 时，温敏型 $tsA58$ 蛋白会发生自发性的构象热变性失活。大 T 抗原的沉默促使细胞立即退出细胞周期，停止分裂，并迅速启动生理学成熟分化，展现出与在体（in vivo）完全一致的血-视网膜内层屏障（Inner Blood-Retinal Barrier, iBRB）的转运体功能与紧密连接网。

二 核心科研价值与血-视网膜屏障（iBRB）药理学模型

TR-iBRB2 是目前国际上公认研究“血液-视网膜屏障（BRB）”最为核心和标准化的体内外替代（in vitro）模型工具：

                      [ 循环血液微血管侧 (Blood Side) ]                                      │                                      ▼             ┌──────────────────────────────────────────────────┐             │       TR-iBRB2 内皮单层细胞屏障 (37°C 紧密分化)      │             │                                                  │             │  [GLUT1]      [OCTN2]      [system xc-]   [P-gp] │             │  (葡萄糖)     (左旋肉碱)     (L-胱氨酸)    (药物外排)│             └────────────────────────┬─────────────────────────┘                                      │                                      ▼                       [ 视网膜神经组织侧 (Retina Side) ]

1. 内层血-视网膜屏障（inner BRB）分子转运网络解析：

   视网膜微血管内皮细胞之间通过高度密集的紧密连接（Tight Junctions）限制了分子的自由扩散。TR-iBRB2 在分化状态下高度表达多种特异性极性转运体，可用于精确追踪药物能否穿透眼底屏障：

   • 糖转运体：高表达 GLUT1（$Slc2a1$），具备对 3-O-甲基-D-葡萄糖（3-OMG）的饱和米氏饱和动力学摄取特征（$K_m \approx 5.56\text{ mM}$）。

   • 肉碱与阳离子转运：特异性搭载 OCTN2（有机阳离子/肉碱转运体2），负责介导乙酰左旋肉碱从血液向视网膜的定向主动跨膜转运。

   • 抗氧化屏障：选择性高表达 System $x_c^-$ 丙氨酸-谷氨酸共转运系统（而同期的血脑屏障 TR-BBB 细胞通常不表达），用于摄取 L-胱氨酸以对抗眼底的光诱导氧化应激。

2. 多药耐药性与排毒泵（ABC Transporters）机制：

   细胞基底膜高丰度表达约 180 KDa 的 P-糖蛋白（P-glycoprotein, P-gp），并可通过 RT-PCR 稳定检出 mdr1a、mdr1b 以及 mdr2 基因。这使得 TR-iBRB2 成为评估小分子眼科靶向药是否会被眼底血管自发外排、筛选高靶向眼底穿透性前药（Prodrugs）的经典重磅底盘。

3. 糖尿病视网膜病变（DR）及微血管损伤模型：

   在 37 ℃ 分化后，给予 TR-iBRB2 高糖（Hyperglycemia Stress）或高炎性因子（如 Interleukin-1$\beta$, IL-1$\beta$）刺激，细胞能极好地模拟出临床上糖尿病视网膜微血管断裂、白细胞粘附（Leukostasis）、线粒体功能障碍、氧化物/活性氮（ROS/iNOS）爆发以及内皮细胞凋亡等病理演变。常被用于筛选原花青素 B2（Procyanidin B2）、川芎嗪（Tetramethylpyrazine）等眼底毛细血管保护剂。

三 实验室细胞复苏、增殖扩张与分化实验标准流线

1. 专用培养基与核心包被基质配方

TR-iBRB2 细胞对培养基质具有高度依赖性，日常栽培及铺板必须使用经过胶原蛋白包被的容器，否则会导致内皮细胞成纤维化漂移或大面积贴壁失败。

• 基质包被规范：培养瓶/实验多孔板在接种前，必须使用 I 型鼠尾胶原蛋白（Collagen Type I，推荐终浓度约为 $15 - 30\ \mu\text{g/L}$ 或按厂家指南） 铺底包被，置于 37 ℃ 结合 2 小时后，使用无菌 PBS 洗涤 2 次方可接种。

• 完全生长培养基配置（增殖与维持通用）：

  • 基底培养基：高糖 DMEM 培养基（Dulbecco's Modified Eagle's Medium），含 2 mM L-谷氨酸。

  • 血清品质：10% 优质胎牛血清（FBS）（无需灭活）。

  • 促生长因子：15 $\mu\text{g/L}$ 内皮细胞生长因子（Endothelial Cell Growth Factor, ECGF） 或 替代使用 VEGF 混剂，用以维持内皮特征。

  • 抗生素：1% 经典青霉素-链霉素双抗。

2. 冻存细胞的快速低倍增复苏流线（于 33 ℃ 启动）

1. 提前制备好胶原蛋白 I 型包被的 T25 培养瓶，加入 5 mL 预热至 33 ℃ 的完全生长培养基，并将培养瓶置于 33 ℃、5% $CO_2$ 孵箱 中调节气相平衡。

2. 从液氮罐中取出 TR-iBRB2 冻存管，迅速投入 33 ℃ - 37 ℃ 水浴箱中剧烈水平摇晃，在 60 - 90 秒内完成全量融化。

3. 用 75% 酒精消毒管壁，移入超净台，将融化后的浓稠细胞悬液缓慢滴加到盛有 4 mL 预热完全培养基的 15 mL 离心管中，极其轻柔地吹打混匀。

4. 低速离心洗涤：在 200 × g（约 1000 rpm）下低速离心 5 分钟。

5. 弃去含有 DMSO 废液的上清液，加入 1.5 mL 新鲜完全培养基（含 ECGF 因子）将细胞块轻柔弹散，随后全量接种到预先包被好的 T25 瓶中。

6. 盖紧瓶盖，置于 33 ℃ 孵箱 中静置培养。24 小时后必须全量更换一次新鲜培养基，以彻底清除死细胞碎屑。

3. 日常增殖状态下的传代维护流程（33 ℃ 条件）

• 汇合度控制红线：在 33 ℃ 扩增扩繁阶段，必须在细胞汇合度达到 75% - 85% 时进行传代。切勿让内皮细胞在 33 ℃ 长满至 100% 溢出密度，否则密集的接触压力会导致细胞在低稳态下过早启动部分自发分化。

• 消化操作步骤：

  1. 吸除旧培养基，使用不含钙镁离子的无菌 PBS 溶液轻柔漂洗细胞单层 1 次。

  2. 加入适量 0.05% Trypsin - 0.02% EDTA 消化液（T25 瓶通常加入 1 mL），室温（或 33 ℃）下孵育消化。

  3. 镜下微观监控：TR-iBRB2 作为微血管内皮，对胰酶较为敏感。通常在 1 - 3 分钟内 细胞就会明显回缩并圆化。一旦见轻敲瓶身细胞呈流沙状整体滑落，应立即加入 2 倍体积的含血清完全培养基终止消化。

  4. 用移液枪温柔吹打瓶壁，使细胞分散为单细胞悬液。

  5. 200 × g 离心 5 分钟，弃上清，用新鮮培养基重悬，按 1:3 到 1:4 的稀释比例 接种到新包被的胶原底物瓶中，继续在 33 ℃ 培养。

4. 屏障实验诱导：至 37 ℃ - 39 ℃ 的分化操作规范

当需要将 TR-iBRB2 细胞用于跨膜药物转运、3-OMG 糖摄取、Transwell 电阻（TEER）测定或糖尿病高糖损伤药效实验时，应执行以下温控分化转换：

1. 在 33 ℃ 下收集处于对数生长期的优质 TR-iBRB2 细胞。

2. 将细胞按实验设计所需的密度（如：Transwell 聚酯膜小室、多孔板、或铺有玻璃玻片的胶原包被孔内）进行接种。

3. 完成热休克变性转换：将接种好细胞的培养器具，直接放入 37 ℃ 或者是 39 ℃（根据特定分化转运体表达强度而定，37 ℃ 最为常用） 的 5% $CO_2$ 恒温孵箱中。

4. 分化维持窗：在此非许可温度下，SV40 大 T 抗原降解，细胞停止分裂并横向舒展肥大，分化成紧密交织的完整血-视网膜内层屏障单层。通常在 37 ℃ 持续诱导分化 3 - 5 天后，即可开展下游的极性药物通透性测试或屏障毒理学实验。

5. 菌株与细胞长期保存参数

• 高保护性冻存基质配方：80% 高糖 DMEM 基础培养基 + 10% 优质胎牛血清（FBS） + 10% 细胞级二甲基亚砜（DMSO）。

• 冷冻与长期封存流线：

  1. 必须采集处于 33 ℃ 扩增状态下、生长极为旺盛且未长满（汇合度 ~80%） 的对数期细胞作为冻存种子（严禁冻存已经处于 37 ℃ 分化定型的细胞）。

  2. 胰酶消化、离心集菌后，使用预冷的冻存液重悬细胞，将活细胞终密度控制在 $1.5 \times 10^6$ - $3.0 \times 10^6\text{ cells/mL}$。

  3. 分装入无菌冻存管后，立刻置于标准梯度程序降温盒中（如 Mr. Frosty），塞入 -80 ℃ 超低温冰箱中梯度降温过夜（确保满足 -1 ℃/min 的温降速率）。

  4. 24 小时内，迅速将冻存管转移并完全没入液氮罐（-196 ℃）的液相层中实施永久封存。禁止在 -80 ℃ 普通冰箱中进行超过 3 个月的长期存放，以防大 T 抗原基因表达构象发生表观遗传失活。

BioVector NTCC质粒载体菌株细胞蛋白抗体基因保藏中心

电话:400-800-2947

工作QQ/微信同号:1843439339

网址http://www.biovector.net